最新临床医学硕士毕业论文提纲3篇

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临床医学硕士毕业的论文提纲如何书写呢?临床医学硕士毕业的论文提纲成为学生们关注的焦点。下面是小编分享的临床医学硕士毕业的论文提纲,欢迎大家阅读。

最新临床医学硕士毕业论文提纲3篇

临床医学硕士毕业论文提纲篇一:

提要 4-5

中文摘要 5-7

Abstract 7-9

英文缩略词引表 10-14

第1章 引言 14-16

第2章 资料与方法 16-18

2.1 资料来源 16

2.2 文献纳入和排除标准 16

2.3 文献质量评价、筛选及统计学分析 16-17

2.3.1 纳入研究的质量评价 16-17

2.3.2 文献筛选和数据提取 17

2.3.3 统计学分析 17

2.4 敏感性分析 17

2.5 发表偏倚分析 17-18

第3章 结果 18-25

3.1 纳入文献的一般情况 18-19

3.2 META分析结果 19-21

3.2.1 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的汉密尔顿抑郁量表(HAMD)评分情况 193.2.2 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的神经功能缺损程度评分量表(SSS)评分情况 19-203.2.3 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的 Barthel 指数(BI)评分情况 20-213.3 敏感性分析 21-22

3.3.1 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的汉密尔顿抑郁量表(HAMD)评分敏感性分析情况 213.3.2 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的神经功能缺损程度评分量表(SSS)评分敏感性分析情况 21-223.3.3 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的 Barthel 指数(BI)评分敏感性分析情况 223.4 纳入研究的发表偏倚分析 22-25

3.4.1 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的汉密尔顿抑郁量表(HAMD)评分发表偏倚分析情况 22-233.4.2 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的神经功能缺损程度评分量表(SSS)评分发表偏倚分析情况 233.4.3 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的 Barthel 指数(BI)评分发表偏倚分析情况 23-25第4章 讨论 25-29

第5章 结论 29-30

参考文献 30-33

综述 33-48

参考文献 43-48

附表 48-55

作者简介及在学期间所取得科研成果 55-56

致谢 56

临床医学硕士毕业论文提纲篇二:

摘要 4-11

Abstract 11-19

目录 20-22

符号说明 22-24

第一章 Profilin-1在AGEs诱导的内皮损伤中的'作用 24-40

1 前言 24-26

2 材料与方法 26-33

2.1 材料 26-28

2.2 方法 28-33

3 结果 33-34

3.1 AGEs浓度对内皮细胞Profilin-1表达的影响 33

3.2 AGEs对内皮细胞Profilin-1表达的影响呈时间依耐性 33

3.3 AGEs对profilin-1mRNA表达的影响 33

3.4 AGEs对细胞上清液中NO、ADMA、ICAM-1水平的影响 33

3.5 AGEs对内皮细胞活性氧的影响 33-34

3.6 AGEs诱导的profilin-1对内皮细胞结构的异常 34

4 附图 34-38

5 讨论 38-39

6 结论 39-40

第二章 Profilin-1基因沉默后AGEs诱导的内皮细胞表达 40-66

1 前言 40-42

2 材料与方法 42-53

2.1 材料 42-45

2.2 方法 45-53

3 结果 53-56

3.1 Profilin-1 siRNA干扰对AGEs诱导的Profilin-1表达的影响 53

3.2 AGEs对细胞上清液中NO、ADMA、ICAM-1水平的影响 53

3.3 不同抑制剂对AGEs诱导内皮细胞的Profilin-1表达的影响 53-54

3.4 各种不同抑制剂对AGEs诱导内皮细胞的细胞因子的影响 54

3.5 AGEs以及各种抑制剂处理内皮细胞后对活性氧的影响 54

3.6 各种不同抑制剂对AGEs诱导的内皮细胞旳profiHn-l的表达,以及F -肌动蛋白分布的影响 54-55

3.7 AGEs诱导的内皮细胞proiflin-l siRNA的表达以及F-actin分布的影响 55

3.8 PKC以及NF-κB通路与AGEs诱导的内皮细胞损伤的可能机制 55-56

4 附图 56-63

5 讨论 63-65

6 结论 65-66

第三章 AGEs介导的大鼠中profilin-1的表达 66-89

1 研究背景 66-67

2 材料与方法 67-79

2.1 材料与仪器 67-70

2.2 方法 70-79

3 结果 79-81

3.1 各组大鼠实验前体重情况比较 79

3.2 大鼠胸主动脉及肾脏组织切片光镜下苏木精-伊红(HE)染色观察以及免疫组化的改变 79-80

3.3 AGEs对胸主动脉内-中膜厚度(IMT)以及管腔(LD)的影响 80

3.4 大鼠胸主动脉血管profilin-1蛋白以及profilin-1 mRNA的表达 80

3.5 AGEs诱导的大鼠ICMA-1、ADMA以及NO水平的变化 80-81

4 附图 81-86

5 讨论 86-89

参考文献 89-95

综述 95-107

参考文献 102-107

在读期间发表的主要论文 107-108

致谢 108

临床医学硕士毕业论文提纲篇三:

摘要 4-7

Abstract 7-10

英文缩略词 11-12

目录 12-14

前言 14-16

第一章 氧化应激模型的建立 16-29

引言 16-17

第一节 实验方法 17-20

1 仪器与材料 17-18

2 N2a细胞的培养 18-19

3 氧化应激模型的建立 19-20

4 在光学显微镜下观察细胞之形态 20

第二节 实验结果 20-26

1 不同浓度过氧化氢对N2a细胞作用相同时间的结果 20-24

3 80μM过氧化氢氧化损伤N2a细胞不同时间的形态变化 24-26

第三节 讨论 26-28

第四节 结论 28-29

第二章 氧化应激状态下CDK1对caspase-2活性及高尔基体形态的影响 29-51

引言 29-30

第一节 实验方法 30-38

1 仪器与材料 30-31

2 N2a细胞培养 31

3 流式细胞术及Hoechst染色检测细胞凋亡情况 31-33

4 Western blot检测caspase-2的表达 33-36

5 分光光度法检测caspase-2活性 36-37

6 免疫荧光观察高尔基体形态 37-38

7 统计学分析 38

第二节 实验结果 38-46

1 抑制CDK1活性对氧化应激中N2a细胞凋亡率的影响 38-40

2 Caspase-2的表达及活性的变化 40-41

3 免疫荧光观察高尔基体形态 41-45

4 Hoechst染色观察细胞核 45-46

第三节 讨论 46-50

1 高尔基体应激 46

2 CDK1对氧化应激中N2a细胞损伤的影响 46-47

3 CDK1对高尔基体形态的影响 47

4 CDK1与caspase-2活性的关系 47-48

5 总结 48-50

第四节 结论 50-51

参考文献 51-55

综述 55-61

参考文献 58-61

致谢 61-62